Controle in vitro do crescimento micelial e da germinação de conídios de Botrytis cinerea por metabólitos e extratos de Pisolithus microcarpus/ In vitro control of mycelial growth and germination of Botrytis cinerea conidia by metabolites and extracts from Pisolithus microcarpus

Authors

  • Maria Luz d'Alma Reis Olher
  • Danielle Cunha de Souza Pereira
  • Maurilio Lopes Martins
  • Eliane Maurício Furtado Martins
  • André Narvaes da Rocha Campos

DOI:

https://doi.org/10.34117/bjdv7n2-225

Keywords:

antagonismo, tecnologias alternativas, B. cinérea.

Abstract

A utilização indiscriminada de agrotóxicos no controle de doenças na fruticultura leva a graves problemas como a intoxicação dos consumidores e o surgimento de populações de patógenos resistentes a fungicidas. Neste contexto é desejável o desenvolvimento de tecnologias alternativas à utilização de agrotóxicos. O objetivo deste trabalho foi avaliar o efeito de extratos e metabólitos de Pisolithus microcarpus no crescimento micelial e na germinação de conídios de Botrytis cinerea in vitro. Foram realizados ensaios de confrontação direta inoculando micélio de P. microcarpus e B. cinerea em meio de cultura Batata-Dextrose-Ágar (BDA), colocados em posições opostas por 0, 7 e 14 dias antes da inoculação do fungo fitopatogênico. Também foram realizados ensaios com metabólitos, obtidos em meio sólido e líquido, e extratos de P. microcarpus, isolados PIS10 e PIS13. Em todos os tratamentos, o controle consistiu de placas inoculadas apenas com micélios ou conídios de B. cinerea. Observou-se que a confrontação direta não determinou ação de antagonismo de P. microcarpus ao crescimento de B. cinerea. Porém, em comparação ao controle, observou-se que a presença do fungo ectomicorrízico no meio, influenciou na formação de estruturas de resistência (escleródios) de B. cinerea, o que sugere haver mecanismo de inibição. O isolado PIS10 apresentou inibição do crescimento micelial de 39% e da germinação de 99,6% em cultivo subsequente. Para os metabólitos obtidos em meio líquido, observou-se inibição do crescimento micelial de B. cinerea de 14,6% e da germinação de até 83%. Para os extratos, observou-se inibição do crescimento micelial de B. cinerea de 25% e da germinação de até 99,7%. Conclui-se que os metabólitos e extratos de P. microcarpus mostraram-se eficientes no controle in vitro do crescimento micelial e da germinação de B. cinerea, sendo necessário estudos para determinar o potencial de inibição destes extratos e metabólitos in vivo.

References

ABREU, V. P de. Antagonismo in vitro de isolados de Pisolithus spp. Sobre fungos fitopatogênicos. 2012, 37 f. TCC. (Graduação em Agroecologia). Instituto Federal de Educação Ciência e Tecnologia do Sudeste de Minas Gerais, Rio Pomba, 2012.

ABREU, V.P.; MARTINS, G.S.L.; CAMPOS, A.N.R. Basidiocarpos de fungos ectomicorrízicos em plantação de Eucalyptus urograndis na Zona da Mata de Minas Gerais: principais gêneros e distribuição sazonal. Boletim do Observatório Ambiental Alberto Ribeiro Lamego. v.6, n. 2, p. 23-36, 2013.

AMERI, A.; GHADGE, C.; VAIDYA, J. G.; DEOKULE, S. S. Anti-Staphylococcus aureus activity of Pisolithus albus from Pune, India. Journal of Medicinal Plants Research, v. 5, n. 4, p. 527-532, 2011.

ANTONIOLLI, L. R.; SILVA, G. D.; ALVES, S. A. M.; MORO, L. Controle alternativo de podridões pós-colheita de framboesas. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 46, n. 9, p. 979-984, 2011.

BAUTISTA-BAÑOS, S.; HERNÁNDEZ-LAUZARDO, A. N.; VELÁZQUEZ-DEL, VALLE, M. G.; HERNÁNDEZ-LÓPEZ, M.; BARKA, E. A.; BOSQUES-MOLINA, E.; WILSON, C. L. Chitosan as a potential natural compound to control pre and postharvest diseases of horticultural commodities. Crop Protection, v. 25, n. 2, p. 108-118, 2006.

CAMPOS, A.N.R.; COSTA, M.D. Histochemistry and storage of organic compounds during basidiosporogenesis in the ectomycorrhizal fungus Pisolithus microcarpus. World Journal of Microbiology and Biotechnology. v. 26, n. 10, p. 1745-1753, 2010a.

CAMPOS, A.N.R.; COSTA, M.D. Basidiosporogenesis, meiosis, and post-meiotic mitosis in the ectomycorrhizal fungus Pisolithus microcarpus. Fungal Genetics and Biology. v. 47, n. 5, p. 477-483, 2010b.

COSTA, M.D; CAMPOS, A.N.R.; SANTOS, M.L.; BORGES, A.C. In vitro ectomycorrhiza formation by monokaryotic and dikaryotic isolates of Pisolithus microcarpus in Eucalyptus grandis. Revista Árvore. v. 34, n. 3, p. 377-387, 2010.

CUZZI, C. Extratos de canola no controle de Botrytis cinerea in vitro e do mofo cinzento em pós-colheita de morangos. 2013. 64f. Dissertação (Mestrado em Agronomia) - Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Pato Branco, 2013.

DONADIO, S.; MONCIARDINI, P.; ALDUINA, R.; MAZZA. P.; CHIOCCHINI, C.; CAVALETTI, L.; SOSIO, M.; PUGLIA, A. M. Microbial technologies for the discovery of novel bioactive metabolites. Journal of biotechnology, v. 99, n. 3, p. 187-198, 2002.

FERNÁNDEZ ACERO, F. J.; CARBÚ, M.; EL-AKHAL, M. R.; GARRIDO, C.; GONZÁLEZ-RODRÍGUEZ, V.; CANTORAL, J. M. Development of proteomics-based fungicides: new strategies for environmentally friendly control of fungal plant diseases. International journal of molecular sciences, v. 12, n. 1, p. 795-816, 2011.

GOMES, F.P. Curso de estatística experimental. 15. ed. Piracicaba: Editora FEALQ, 2009. 451 p.

HASHMI, M. S.; EAST, A. R.; PALMER, J. S.; HEYES, J. A. Pre-storage hypobaric treatments delay fungal decay of strawberries. Postharvest Biology and Technology, v. 77, p. 75-79, 2013.

KOPE, H. H.; FORTIN, J. A. Genetic variation in antifungal activity by sibling isolates of the ectomycorrhizal fungus Pisolithus arhizus. Soil Biology and Biochemistry, v. 23, n. 11, p. 1047-1051, 1991.

LALÈVE, A.; FILLINGER, S.; WALKER, A. S. Fitness measurement reveals contrasting costs in homologous recombinant mutants of Botrytis cinerea resistant to succinate dehydrogenase inhibitors. Fungal Genetics and Biology, v. 67, p. 24-36, 2014.

LORENZETTI, E. R. Controle de doenças do morangueiro com óleos essenciais e Trichoderma spp. 2012, 105 f. Tese. (Doutorado em Agronomia) – Universidade Federal de Lavras, Lavras, 2012.

MAZARO, S. M.; DESCHAMPS, C.; DE MIO, L. L. M.; BIASI, L. A.; GOUVEA, A. DE; SAUTTER, C. K. Comportamento pós-colheita de frutos de morangueiro após a aplicação pré-colheita de quitosana e acibenzolar-S-metil. Revista brasileira de fruticultura, v. 30, p. 185-190, 2008.

MIRAHMADI, F.; HANAFI, Q. M.; ALIZADEH, M.; MOHAMADI, H.; SARSAIFEE, M. Effect of low temperature on physicochemical properties of different strawberry cultivars. Journal of Food Science and Technology, v. 39, n. 2, 109-115. 2011.

R CORE TEAM. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing (2016). Vienna, Áustria. Disponível em: < http://www.R-project.org/>. Acesso em: 28/06/2016.

SARAVANAKUMAR, K.; YU, D.; DOU, K.; WANG, M.; LI, Y.; CHEN, J. Synergistic effect of Trichoderma-derived antifungal metabolites and cell wall degrading enzymes on enhanced biocontrol of Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum. Biological Control, v. 94, p. 37-46, 2016.

SELOSSE, M. A.; RICHARD, F.; He, X.; SIMARD, S. W. Mycorrhizal networks: des liaisons dangereuses. Trends in Ecology & Evolution, v. 21, n. 11, p. 621-628, 2006.

SUH, H. W.; CRAWFORD, D. L.; KORUS, R. A.; SHETTY, K. Production of antifungal metabolites by the ectomycorrhizal fungus Pisolithus tinctorius strain SMF. Journal of industrial microbiology, v. 8, n. 1, p. 29-35, 1991.

TSANTRIZOS, Y. S.; KOPE, H. H.; FORTIN, A. J.; OGILVIE, K. K. Antifungal antibiotics from Pisolithus tinctorius. Phytochemistry, v. 30, n. 4, p. 1113-1118, 1991.

UGOLINI, L.; MARTINIB, C.; LAZZERIA, L.; D’AVINO, L.; MARTA, M. Control of postharvest grey mould Botrytis cinerea Per.: Fr. on strawberries by glucosinolate-derived allyl-isothiocyanate treatments. Postharvest Biology and Technology, v. 90, p. 34-39, 2014.

VAIDYA, G. S.; SHRESTHA, K.; WALLANDER, H. Antagonistic study of ectomycorrhizal fungi isolated from baluwa forest (central nepal) against with pathoigenic fungi and bacteria. Scientific World, v. 3, n. 3, 2005.

VICENTE, A. R.; MARTI?NEZ, G. A.; CHAVES, A. R.; CIVELLO, P. M. Influence of self-produced CO2 on postharvest life of heat-treated strawberries. Postharvest Biology and Technology, v. 27, n. 3, p. 265-275, 2003.

VINALE, F.; SIVASITHAMPARAM, K.; GHISALBERTI, E. L.; MARRA, R.; WOO, S. L.; LORITO, M. Trichoderma plant–pathogen interactions. Soil Biology and Biochemistry, v. 40, n. 1, p. 1-10, 2008.

ZENGPU, L.; JUNRAN, J.; CHANGWEN, W. Antagonism between ectomycorrhizal fungi and plant pathogens. IN: BRUNDETT, M.; DELL, B.; MALAJCZUK, N.; MINGQIN, G. (Eds.) Mycorrhizas for Plantation Forestry in Asia, p. 77-81, 1994.

Published

2021-02-11

How to Cite

Olher, M. L. d’Alma R., Pereira, D. C. de S., Martins, M. L., Martins, E. M. F., & Campos, A. N. da R. (2021). Controle in vitro do crescimento micelial e da germinação de conídios de Botrytis cinerea por metabólitos e extratos de Pisolithus microcarpus/ In vitro control of mycelial growth and germination of Botrytis cinerea conidia by metabolites and extracts from Pisolithus microcarpus. Brazilian Journal of Development, 7(2), 15008–15025. https://doi.org/10.34117/bjdv7n2-225

Issue

Section

Original Papers